Эксклюзионная жидкостная хроматография карбоксиметилхитина и карбоксиметилхитозана из рачков Artemia Parthenogenetica Аральского моря

Разработаны методики получения водорастворимых производных хитина и хитозана из цист рачков рода Artemia Parthenogenetica Аральского моря путем карбоксиметилирования ОН- и NH₂-групп их цепей. Изучены элюционные, вязкостные и полиэлектролитные свойства карбоксиметилхитина и карбоксиметилхитозана в эксклюзионной жидкостной хроматографии. Подавление электростатических эффектов и реализация эксклюзионного механизма разделения указанных полисахаридов достигнуто при использовании в качестве элюента водного раствора нитрата натрия с концентрацией 0,1 моль/л, который и был рекомендован для определения молекулярно-массовых характеристик.

1. Shariatinia, Z. Carboxymethyl chitosan: Properties and biomedical applications / Z. Shariatinia // Int. J. Biol. Macromol. – 2018. – Vol. 120. – P. 1406–1419.

2. Yang, L. Chemical structural and chain conformational characterization of some bioactive polysaccharides isolated from natural sources / L. Yang, L.-M. Zhang // Carbohydr. Polym. – 2009. – Vol. 76. – P. 349–361.

3. A sulfated polysaccharide, fucans, isolated from brown algae Sargassum vulgare with anticoagulant, antithrombotic, antioxidant and anti-inflammatory effects / C. M. P G. Dore [et al.] // Carbohydr. Polym. – 2012. – Vol. 91. – P. 467–475.

4. Effect of sulfated derivatives of chitosan some blood coagulant factors / S. Hirano [et al.] // Carbohydr. Res. – 1985. – Vol. 137. – P. 205–215.

5. Nanobiocomposites of Pharmacophoric Iron and Bismuth Oxides with Arabinogalactan Matrix / G. P. Aleksandrova [et al.] // Rus. J. Gen. Chem. – 2020. – Vol. 90, № 4. – P. 672–679.

6. Gaikwad, B. V. Isolation and characterization of chitosan from crab (Scylla serrata) shell waste / B. V. Gaikwad, J. M. Koli, A. S. Desai // Int. J. Scientific and Appl. Res. –2015. – Vol. 2, iss. 8. – P. 78–84.

7. Berdimbetova, G. E. Influence of the chemical sequence of processing of Artemia Parthenogenetica cysts of the Aral sea on the yield and physicochemical characteristics of chitin / G. E. Berdimbetova, B. P. Karlybaeva, A. S. Boymirzaev // Actual Problems of Chemistry, Biology and Technology of Natural Compounds: XIV Int. Symp. – Tashkent, 2021. – P. 237.

8. Structural differences between chitin and chitosan extracted from three different marine sources / S. Hajji [et al.] // Int. J. Biol. Macromol. – 2014. – Vol. 65. – P. 298–306.

9. Шикера, В. В. Исследование биологической активности хитозановых препаратов из цист Artemia Salina / В. В. Шикера. – Barnaul, 2004. – 136 p.

10. Баташов, Е. С. Получение хитозансодержащих препаратов из некондиционных цист Artemia sp. и изучение их влияния на растения: дис. … канд. биол. наук: 03.00.16 / Е. С. Баташов. – Бийск, 2006. – 217 с.

11. Abdou, E. Extraction and characterization of chitin and chitosan from local sources. / E. Abdou, K. Nagy, M. Elsabee // Bioresour. Technol. – 2008. – Vol. 99, iss. 5. – P. 1359–1367.

12. Synthesis of carboxymethyl chitin in aqueous solution and its thermo- and pH-sensitive behaviors / Q. Yang [et al.] // Carbohydr. Polym. – 2016. – Vol. 137. – Р. 600–607. doi: 10.1016/j.carbpol.2015.11.025

13. Synthesis of Carboxymethyl Chitosan and its Rheological Behaviour in Pharmaceutical and Cosmetic Emulsions / H. Liu [et al.] // J. Appl. Pharm. Sci. – 2017. – Vol. 7, iss. 10. – Р. 070–078.

14. Modification of the arabinogalactan matrix in the formation of metal-polymer nanobiocomposities / G. P. Aleksandrova [et al.] // Nanotechnologies in Russia. 2019. – Vol. 14, № 1–2. – P. 41–47.

15. Studies on Chitin VIII. Some properties of Water Soluble Chitin Derivatives / S. Tokura [et al.] // Polym. J. – 1983. – Vol. 15, № 6. – P. 485–489.

16. Боймирзаев, А. С. Об универсальной калибровке в эксклюзионной хроматографии поливинилпирролидона и полистирола в диметилформамиде / А. С. Боймирзаев, В. В. Нестеров, Б. Г. Беленький // Высокомолекулярные соединения. – 1986. – Т. 28, № 12. – С. 2623–2626.